SDS研究实验报告

SDS研究实验报告      一、研究背景及目的      对于那些生物体内含量高、易于分离结晶获得纯品的蛋白,可以通过测定氨基酸序列,借助各种氨基酸的分子量求出蛋白的分子量,并与质谱等手段相互结合,

SDS研究实验报告 一、研究背景及目的 对于那些生物体内含量高、易于分离结晶获得纯品的蛋白, 可以通过测定氨基酸序列,借助各种氨基酸的分子量求出蛋白的分子 量,并与质谱等手段相互结合,得到精确可信的分子量。但对于那些 含量少,不易分离的蛋白,无法实现结晶,就必须借助其他手段测定 其分子量。 要找到能够测定分子量的实验手段,首先要考虑那些能够将 不同分子按照其各自的分子量分离的技术。在众多的技术当中,密度 梯度离心、层析、电泳都与物质的分子量有关。其中,超速离心机造 价高,使用过滤层析色谱测分子量要做标准曲线,柱长要求高,且这 些方法不够准确。因此,电泳技术成为了实现分子量测定这一目的的 最佳选择。 但是,在活性电泳中,影响蛋白前迁移率的因素有蛋白质的 电荷性质、分子大小和形状。要测定分子量,就要消除电荷、分子形 状对蛋白迁移率的影响,即使得各种蛋白的电荷、形状不存在显著差 异。对于电荷,使各分子不带电违背电泳的基本原理,而使各分子带 点完全相同是无法实现的,因此考虑使其带上大量电荷,从而让分子 之间的电荷差异可以忽略。在活性电泳中,改变样品的带电情况依靠 的是缓冲液pH的变化,显然不能够使分子大量带电,这就表明必须向 电泳体系中引入其他物质,与蛋白分子定量等量结合,且不改变分子 量差异造成泳动差异。对于分子形状,考虑到功能性蛋白大多是球形 粒子,要保持形状不变,就要实现对蛋白的包裹性结合。而蛋白表面

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SDS研究实验报告一、研究背景及目的对于那些生物体内含量高、易于分离结晶获得纯品的蛋白,可以通过测定氨基酸序列,借助各种氨基酸的分子量求出蛋白的分子量,并与质谱等手段相互结合,得到精确可信的分子量。但对于那些含量少,不易分离的蛋白,无法实现结晶,就必须借助其他手段测定其分子量。要找到能够测定分子量的实验手段,首先要考虑那些能够将不同分子按照其各自的分子量分离的技术。在众多的技术当中,密度梯度离心、层析、电泳都与物质的分子量有关。其中,超速离心机造价高,使用过滤层析色谱测分子量要做标准曲线,柱长要求高,且这些方法不够准确。因此,电泳技术成为了实现分子量测定这一目的的最佳选择。但是,在活性电泳中,影响蛋白前迁移率的因素有蛋白质的电荷性质、分子大小和形状。要测定分子量,就要消除电荷、分子形状对蛋白迁移率的影响,即使得各种蛋白的电荷、形状不存在显著差异。对于电荷,使各分子不带电违背电泳的基本原理,而使各分子带点完全相同是无法实现的,因此考虑使其带上大量电荷,从而让分子之间的电荷差异可以忽略。在活性电泳中,改变样品的带电情况依靠的是缓冲液pH的变化,显然不能够使分子大量带电,这就表明必须向电泳体系中引入其他物质,与蛋白分子定量等量结合,且不改变分子量差异造成泳动差异。对于分子形状,考虑到功能性蛋白大多是球形粒子,要保持形状不变,就要实现对蛋白的包裹性结合。而蛋白表面
的电荷分布情况千差万别,依靠电荷性质无法结合形成稳定的复合物。考虑到蛋白质中含有大量的疏水氨基酸,可以通过疏水作用结合,这就要造成蛋白变性,是疏水基团充分暴露出来,分子不能在维持球型而变成棒状,因此,所选择的物质还需要能够维持复合物形状的统一。基于以上考虑,科学家选择了双亲性物质,既能通过疏水作用与蛋白定量结合成牢固的复合物,又能借助亲水性在溶液中良好分散。新技术的发明常以原有技术作为基础。在活性电泳中,采用碱性体系,依靠浓缩效应实现了样品的浓缩,大大提高了分析的精度。而变性电泳属于全蛋白染色,结果较准确。在变性电泳中,要借助浓缩效应,就要使样品由负极向正极迁移,那么所选择的物质与蛋白结合之后要形成带负电的复合物。就这样,选择了十二烷基硫酸钠(SDS)作为变性剂。而且,发现形成的复合物成棒状,短轴恒定,而长轴与分子量相关。所以,SDS就成为了理想的变性剂。这种方法最适宜测定分子量是15,000—100,000的样品,对低于10,000分子量的水解蛋白不太适用。通过改进,用强电解质离子为前导离子和拖尾离子可对分子量低于10,000的水解蛋白样品进行分子量测定。用这种方法测定蛋白质的分子量,分辨率高,所需设备廉价,与用其他方法测得的分子量相比,误差一般在±10%以内,因而其广泛应用于蛋白分离纯化和分子量测定。因此,SDS-PAGE是目前常用的测定蛋白质分子量的方法。本实验通过利用SDS-PAGE测定实验四纯化的麦清蛋白,学习和掌握SDS-PAGE测定蛋白质分子量的原理,掌握其具体操作;并与活性电泳进行对比,了解其异同,加深对电泳技术了理解。
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