Qiagen基因组提取试剂盒中文操作说明
Qiagen基因组提取试剂盒中⽂操作说明QIAamp DNA Blood Mini简 Kit介:QIAGEN公司出品的QIAamp DNA Blood Mini适 Kit⽤于使⽤微型离⼼机
Qiagen基因组提取试剂盒中⽂操作说明 QIAamp DNA Blood Mini简Kit介: QIAGEN公司出品的QIAamp DNA Blood Mini适Kit⽤于使⽤微型离⼼机或真空处理从全⾎、⾎浆、⾎清、⾎沉、淋巴细胞以及体液样 品中提取总(基因、线粒体和病毒)DNA。该试剂盒可处理带有EDTA、柠檬酸盐和肝素等常规抗凝剂的新鲜或冷冻的全⾎样本,样品量可达 200µl。整套基因组的操作时间约为20–40分钟,⼀般可从200µl健康全⾎中获得4–12 µg DNA,洗脱体积可在50–200µl范围。 抽提原理: 样品中的DNA可以特异性结合到QIAamp的硅胶膜上,通过两次洗涤可以将PCR抑制剂,如:⼆价阳离⼦和蛋⽩完全去除,最后结合在离 ⼼柱上的纯核酸可⽤⽔或试剂盒中的缓冲液进⾏洗脱收集。 开始前的注意事项: 1.所以的离⼼步骤需要在室温(15-25℃)进⾏ 2.如果样品中含有的基因组当量少于10000,请添加载体DNA(carrier DNA) 3. 200µl全⾎样品可以得到约3-12µgDNA 开始前的准备⼯作: 1.将样品平衡到室温(15-25℃) 2.将⽔浴或是⾦属浴加热到56℃,以备第4步使⽤ 3.将Buffer AE或蒸馏⽔平衡到室温,⽤于第11步的洗脱 4.确保Buffer AW1、AW2以及QIAGEN蛋⽩酶已经按照说明配置完毕 5.如果在Buffer AL中出现沉淀物,请在56℃孵育使其溶解 操作步骤: 以下为整个基因组提取操作的流程图,由于真空装置并⾮所有的实验室都配置,所以这⾥介绍的是离⼼法(流程图左侧)。以下译 介⾃QIAGEN官⽅出品的说明部分,⿊粗体为实验操作的主体部分。 1.吸取20µl QIAGEN蛋⽩酶(或者蛋⽩酶K)⾄1.5ml离⼼管的底部。 2.加⼊200µl待提取基因组的样品⾄离⼼管中。可以加⼊不超过200µl的全⾎、⾎浆、⾎清、⾎沉棕黄层,或者溶于200µl PBS中不超过 5*106的淋巴细胞。 如果样品体积不⾜200µl,请使⽤PBS补⾜。前两步的顺序也可以调换,即将蛋⽩酶加⼊样品中,但此时需要注意充分混匀。 3.加⼊200µl Buffer AL⾄样品中,涡旋振荡15s混匀。完全混匀以得到均⼀化的溶液对于保证样品的充分裂解⾮常重要 如果样品体积⼤于200µl,请等量增加蛋⽩酶和Buffer AL的量。⼤体积样品推荐使⽤Midi或Maxi试剂盒。 操作时注意,请不要将 QIAGEN蛋⽩酶(或蛋⽩酶K)直接加⼊Buffer AL中。 4. 56℃孵育10min。DNA得率在该条件下已经达到最⼤值,延长孵育时间不会进⼀步提⾼得率。 5.快速离⼼,去除残留在1.5ml离⼼管盖⼦中的液滴。 6.加⼊200µl(样品等体积)的⼄醇(96-100%),涡旋振荡15s混匀。振荡完毕后,快速离⼼,去除残留在1.5ml离⼼管盖⼦中的液滴。 7.将步骤6得到的混合物转移⾄QIAamp Mini离⼼管柱(在⼀个2ml的收集管中)注意不要弄湿边缘的环。扣上盖⼦(在离⼼过程中关闭每 个离⼼管的盖⼦以防⽌离⼼过程中产⽣⽓溶胶),6000g(8000rpm,选择低速离⼼的⽬的是减少噪⾳,使⽤更⾼的转速不会影响DNA最 终的得率和纯度,在样品为⾎沉或者淋巴细胞时,推荐使⽤最⾼转速以防⽌堵塞)离⼼1min。将QIAamp Min离⼼柱放⼊⼀个新的⼲净 2ml接收管中(已提供),将滤液连同使⽤过的收集管丢弃。 8.⼩⼼打开QIAamp Mini离⼼柱,加⼊500µl Buffer AW1(注意不要将边缘环弄湿)。盖紧盖⼦,6000g(8000rpm)离⼼1min。将 QIAamp Mini离⼼柱转移⾄⼀个新的2ml收集管中(已提供),将滤液连同使⽤过的收集管丢弃。即使最初加⼊的样品量⼤于200µl,此步也不需 要增 加Buffer AW1的⽤量。 9.弃滤液,⼩⼼打开QIAamp Mini离⼼柱,加⼊500µl Buffer AW2(注意不要将边缘环弄湿)。盖紧盖⼦,最⼤转速(20000g; 14000rpm)离⼼3min。 10.推荐步骤:将QIAamp Mini离⼼柱转移到⼀个新的2ml收集管(试剂盒⾥未提供,可以使⽤我们平时使⽤的1.5ml离⼼管,将盖⼦剪 掉,作为收集管)。最⼤转速离⼼1min。该步骤可以帮助降低Buffer AW2残留的可能性。 11.将QIAamp Mini离⼼柱转移到⼀个新的1.5ml收集管(未提供)。⼩⼼打开离⼼柱,加⼊200µl Buffer AE或双蒸⽔(洗脱体积⼤于200µl 时不 适⽤于1.5ml收集管,因为此时离⼼柱下缘会于洗脱液接触,从⽽导致在离⼼过程中可能产⽣⽓溶胶;洗脱体积少于200µl会显著增加洗脱 液中DNA的浓度,但会降低总的DNA得率;对于少于1µg的DNA来说,推荐使⽤50µl的洗脱液;使⽤100µl洗脱液洗涤2次与使 ⽤100µl洗脱液洗涤⼀次的效果差不多)。室温(15-25℃)孵育1min(⼀般来说,孵育时间延长⾄5min可以提⾼得率),然后6000g (8000rpm)离⼼1min。如果继续加⼊200µl Buffer AE进⾏⼆次洗脱,可以将得率提⾼约15%。 北京华夏远洋科技有限公司

